仔猪腹泻病是引起仔猪死亡的主要原因，在养猪生产中较常见，占很大的比例，防止仔猪腹泻具有重要意义，病因有各种病原微生物侵袭所致的传染性因素，有因饲料配合不当、突然更换、断奶、寒冷等引起的非传染性因素。一般哺乳仔猪多为传染性腹泻，保育仔猪以非传染性腹泻为多见，在实际中根据发病原因典型的症状和特点，仔猪传染性腹泻分以下种类：1、细菌性腹泻1）仔猪白痢和仔猪黄痢：病原为致病性大肠杆菌。仔猪白痢特点为：主要发生于10-30日龄仔猪(迟发性)，以10-20日龄居多，发病率高，死亡率低，一窝仔猪发病数可达30%-80％。一年四季均可发生，多发于寒冬、炎热季节。仔猪未及时吸吮初乳，饥饿或过饱，饲养不良，饲料配比不当或突然改变，母乳中含脂率过高，气候突变是本病主要诱因。病猪突然发生腹泻排出灰白色浆状、糊状粪便，腥臭粘腻，能自行康复，死亡的少。仔猪黄痢特点是：主要发生于1周龄内仔猪(早发性)，以1—3日龄居多，发病率、死亡率都很高。一窝仔猪发病达90％以上，病死率有的达100％，以排黄色或黄白色水样粪便和迅速死亡为特征。病猪精神萎顿，粪便呈黄色浆状、腥臭，严重的肛门松驰，排粪失禁，沾污尾、金阴加腿部，迅速衰弱、消瘦、脱水、昏迷至死亡。2）仔猪红痢：也叫猪梭菌性肠炎，病原为C型产气莫膜梭菌(魏氏梭菌)。特点是主要发生于1周龄以内的仔猪，以1-3日龄新生仔猪多，发病率各不相同，最高达100％，病死率一般为20-70％。本病一旦发生不易清除。病猪肠粘膜发生炎症和坏死，以排红色稀粪为特征，病程短，死亡率高。3）仔猪副伤寒：病原为沙门氏菌。主要多发于1-2月龄仔猪，3—6月龄仔猪发病少，6月龄以上猪很少发病。一年四季均可发生，多发于寒冷、气温多变、阴雨连绵季节。环境卫生差，仔猪低抗力降低常诱发本病。急性型呈败血症变化，皮肤上有紫红色斑点。亚急性或慢性型特点为肠炎，消瘦，顽固性下痢粪便恶臭，有时带血，病猪精神萎顿，寒战垫草，堆叠在一起。眼有粘性或脓性分泌物，上下眼睑常被粘着，少数发生角膜混浊，严重发展为溃疡。4）猪痢疾：又称猪血痢，病原为猪痢疾密螺旋体。以2-3月龄幼猪发生最多，发病率达90％左右。多数是由于不慎引进带病猪而暴发本病。老鼠带也是重要传染源和传播者。病猪虽经治疗，停药后常复发，康复猪带菌率高，时间长达数月，污染圈舍，用具、饲料、饮水，致使感染猪群，病情绵延不断，成为难以净化的顽固性疾病。以粘液性出血性下痢为特征，严重时粪便呈血胨样，内有大量粘液血块，故称“血痢”。2、病毒性腹泻1）传染性胃肠炎：病原为猪传染性胃肠炎病毒，属冠状病毒科冠状病毒属A病毒。不同年龄猪均可发生，但以2周内哺乳仔猪最易发生，死亡率最高，最高达100％，5周龄以上仔猪死亡率降低，成年猪几乎没有死亡，但耐过本病的仔猪发育不良，成为“僵猪”。以冬季和春季产仔期间发生较多，传染迅速，常是地方性流行。临床以消化道感染为特征，其中仔猪最为严重，表现为体温升高，精神沉郁，食欲减退，最先呕吐，随后剧烈腹泻，排腥臭水样粪便，高度脱水，体重减轻。随着年龄的增长其症状和死亡率都逐渐降低，在免疫区。发病率较低，症状较轻。2）猪流行性腹泻：又称流行性病毒性腹泻，病原为冠状病毒。各种年龄猪都能感染发病，尤以2-5周龄哺乳仔猪受害最为严重，发病率高达50-80％，死亡率低，只有7-20％，主要发生于寒冷季节，其它季节发病较少。特征为呕吐、腹泻、脱水、排黄白色灰暗色水样或糊状稀粪，或在腹泻间有呕吐，多发生于吃食或吃奶后。本病与传染性胃肠炎相似，但较轻且缓和，病死率低，传播也较缓慢些。综上所述，引起仔猪死亡的发生原因是多种多样的，对养殖生产损失也是严重的，对仔猪传染性腹泻只有分清病因，加强饲养管理，才能有效防治。

1. 疫病概况1.1 病原学与流行病学猪链球菌（Streptococcus suis, S. suis）是一种重要的人兽共患病原菌，属革兰氏阳性菌，需氧或兼性厌氧，在血平板上生长的单菌落呈现α-溶血环，显微镜下观察呈短链排列的球菌形态。猪链球菌是一种机会致病菌，可无症状地定植于猪的上呼吸道、肠道、皮肤和生殖器中，一旦机体免疫力下降，猪链球菌就会突破免疫防线，引发呼吸道或全身性感染。此外，猪链球菌也可通过伤口接触或消化道途径感染人，造成公共卫生安全危害和挑战。猪链球菌在全世界各国猪群中均有分布。按照荚膜多糖的类型，猪链球菌可分为29种血清型。不同地区导致发病的主要血清型分布有所不同。从全球来看，临床病例中分离的猪链球菌主要血清型为2、9、3、1/2和7型；在欧洲，血清型2、4、7和9占主导地位；在北美临床猪病例中分离的两种最普遍的血清型为2和3，其次是血清型1/2、8和7；而在南美，血清型1/2、2和3占优势[1]。在我国，致病型血清型以1、2、7、9型为主，其中2型毒力最强且最常见。在基因组水平对不同致病力的猪链球菌进行比较分析，发现致病菌株和非致病菌株之间有一定的遗传差异，其中致病分离株的基因组明显小于非致病菌株[2]，而且大多数的致病型猪链球菌的基因组中存在3个独特的基因组岛，这可能是区分致病型和非致病型猪链球菌的关键[3]。此外，利用MLST能够按照猪链球菌的序列类型（ST）对其进行互补分类，目前已经发现了超过2500种不同的ST分型[4]。1.2 发病与传播特点猪链球菌病的传播无明显季节性，但由于夏季气温高，如果养殖密度过大或卫生条件差时，感染的风险更高。由于母源抗体下降、断奶应激等导致自身免疫力降低，3-8周龄的断奶仔猪最易感且死亡率较高；育肥猪及成年母猪、种猪易感性中等，可能存在带菌的隐性感染，死亡率较低，但生长会受到较大影响，同时成为传染源。猪链球菌可以通过垂直方式和水平方式传播，例如仔猪可被母猪携带的猪链球菌感染；或者通过与畜群中其他受伤个体的频繁接触、挤压、摩擦或者空气中的飞沫进行水平传播，这两种途径交叉使得猪链球菌在畜群内大范围传播。2. 主要临床症状和病理特征2.1 猪中的主要临床症状和病理特征猪链球菌病主要分为4种类型：急性败血型、脑膜炎型、关节炎型、淋巴结炎型。患急性败血型的猪只表现出突发呼吸急促、体温突然迅速升高，患猪若不及时治疗，几小时内就会迅速死亡，眼观患病猪肢体下端及腹部出现明显红色斑块，解剖可见多处脏器出血；脑膜炎型猪链球菌病多发于新生仔猪阶段，发病时尖叫或昏迷，颈部强直，严重时出现角弓反张等神经症状，几小时内迅速死亡，剖检发现脑膜下水肿或出血，脑脊液增多，脑组织可发现明显的中性粒细胞浸润；患关节炎型的猪只表现出关节肿大，难以站立，解剖可观察到关节表面的纤维蛋白性浆膜炎，切开关节囊观察有明显壁增厚，滑液增多，关节腔内出现浑浊、淡黄色的果冻样物质，肌肉出现不同程度坏死；淋巴结炎型猪链球菌病多见于断奶到育肥期间的猪，患病猪只的淋巴结，尤其是颌下淋巴结，触之肿胀坚实，剖检可见淋巴结有化脓灶出现。2.2 人感染后的主要临床症状人可以通过食用猪链球菌污染的食物或通过伤口接触感染猪链球菌。病例多出现在亚洲，以越南和泰国为多发地，这主要与亚洲国家的饮食习惯相关；欧洲也有人感染猪链球菌病例报道，但美洲国家的人患猪链球菌病例报道相对较少。人感染猪链球菌一般导致脑膜炎，感染后遗症表现为听力的不同程度丧失，另有部分患者表现严重的关节炎、败血症及心内膜炎[5]。3. 疾病诊断3.1 传统微生物学诊断猪链球菌病的快速诊断是预防和控制该病的关键。猪链球菌病的传统诊断方法是从病猪体内各器官组织，或者血液、关节液、脑脊液等处取得病料，在含5%羊血的Todd-Hewitt培养基上进行细菌培养，猪链球菌阳性病料中能够分离得到有透明溶血环的小菌落；挑取单菌落使用革兰氏染色进行形态学检查，普通光学显微镜下可观察到呈单个、成对或短链状排列的球菌；或者进一步利用生化试验鉴定，如VP试验阳性进一步确认为猪链球菌。3.2 分子生物学诊断相比于传统的微生物学诊断，分子生物学诊断技术具有快捷、灵敏和准确等优点，是目前猪链球菌病诊断的常用方法。对临床病料进行直接核酸提取，或对样品经过细菌培养后进行细菌的核酸提取，之后使用16S rDNA测序，或直接使用猪链球菌特异性基因gdh进行PCR扩增，可鉴定病料中是否存在猪链球菌。另外，基于核酸的诊断方法不仅可以检测猪链球菌的存在与否，还可以区分猪链球菌的不同血清型。针对猪链球菌不同血清型的特异性荚膜多糖基因cps的特异性区域设计引物，通过多重PCR能够对鉴定猪链球菌的大部分血清型[6]。此外，近年来也开发出了环介导等温扩增（LAMP）[7]、重组酶聚合酶扩增-CRISPR/Cas12（RPA-CRISPR/Cas12）等基于核酸的快速扩增技术[8]，这些技术可使用简单的恒温加热设备快速进行病原鉴定，为猪链球菌病的现场诊断提供了新技术。随着高通量DNA测序技术的不断发展，全基因组测序（WGS）因其能提供更丰富的基因组信息，包括细菌的种属信息、耐药基因、毒力基因等，同时兼具时间和价格成本低等优点，是病原细菌诊断、分型以及流行病学调查的利器，在猪链球菌诊断、分型等领域得到广泛应用[9]。3.3 免疫学诊断基于免疫学的方法也是猪链球菌病诊断的重要方法之一。目前已经有针对猪链球菌2型荚膜多糖的商品化酶联免疫吸附试验（ELISA）抗体检测试剂盒，可用于2型猪链球菌感染的诊断。现有研究也针对猪链球菌的毒力因子（如MRP、EPF等）开发的猪链球菌抗体ELISA检测方法。此外，新型纳米生物材料和纳米复合材料具备强吸附能力、良好的定向能力、生物相容性、对生物分子的捕获和结合能力和分子生物学优势，在猪链球菌病免疫传感器和胶体金免疫层析（GICA）技术开发中得以应用。例如，基于纳米材料的免疫传感器具有简便、快速、特异、灵敏等优点，使得能够灵敏地检测猪链球菌抗原[10]；而胶体金免疫层析（GICA）是一种结合胶体金标记、免疫测定、色谱、单克隆抗体技术和新材料技术的体外诊断技术，无需复杂的操作技术或特殊设备，已成为临床和检疫诊断领域的一个新方向[11]。基于免疫学的诊断方法适用于大规模血清抗体筛查，然而由于猪链球菌的毒力因子和分泌蛋白众多，且猪链球菌无症状携带情况较为普遍，使得假阳性结果的可能性增加，免疫学诊断的难度大。未来针对猪链球菌病开发具有更高灵敏度和特异性的免疫学诊断方法具有重要意义。4. 防控策略4.1 生物安全防控猪链球菌病的防控是一项系统工程。做好生物安全防控是前提条件。首先，在引种时，从具有《种畜禽生产经营许可证》的无疫病场进行引种，引种前必须查看近6个月的疫病检测报告，实地考察猪群健康状况、饲养环境、消毒设施。新引进种猪需隔离30天，置于远离生产区（至少500米）的畜舍，随时观察猪群有无发热等明显症状。使用PCR检测有无猪链球菌存在，尤其是2型和9型；使用ELISA检测引种猪群的抗体水平，最后在隔离期满且各项检测合格后，逐步混群，先让小群猪接触，观察无异常后再合并入大群。其次，猪场内必须建立合适的生物安全体系。严格区分生产区、隔离区、粪污处理区域及生活区，区之间设置消毒设施，保证车辆、人员和物资以“净区至脏区”的方向单向流动，避免交叉感染。最后，日常应加强对畜舍的干燥通风，减少氨气浓度累积，定期交替使用不同消毒剂对舍内进行全方位的消毒处理；按照免疫接种计划进行疫苗免疫，优先对待产母猪及刚出生的仔猪进行疫苗接种，阻止垂直传播的可能性。疫苗并不能产生永久性保护，因此在后续养殖过程中及时检测猪体内的抗体水平，若经检疫发现阳性猪只，应立刻隔离进行密切观察，发病后施以适当的抗生素治疗；暂时空置圈舍并进行消毒；对已经发病急性死亡的猪只必须进行深埋或焚烧后深埋处理；最后及时对其余猪群进行紧急免疫接种。4.2 免疫接种疫苗接种是当前预防猪链球菌病的最经济有效的手段之一。目前，我国已经批准的商品化疫苗包括灭活疫苗、弱毒活疫苗和亚单位疫苗。灭活疫苗具有安全性高、针对性强等特点，但是由于猪链球菌血清型众多以及变异快等问题，在灭活疫苗的选择上需要考虑疫苗菌株与发病菌株的血清型匹配等问题，在选择疫苗之前最好对发病猪链球菌进行准确诊断。弱毒活疫苗具有免疫原性强的优点，但是存在毒力返强的生物安全风险，同时对于抗生素用药也有一定要求。亚单位疫苗则具备安全性高和交叉保护效果好等优点，被认为是具有更好前景的疫苗。当然，亚单位疫苗存在免疫原性较弱、抗原不稳定等缺点。近年来发展起来的纳米技术可以通过新材料或新构架提高抗原稳定性，并激发更强的细胞免疫，在亚单位疫苗开发中具有巨大潜力。4.3 药物控制药物控制也在猪链球菌病防治中发挥重要作用。早期的养猪业在治疗猪链球菌感染的猪群时，四环素类、β-内酰胺类和大环内酯类的抗生素应用最为广泛。但是，近年来的细菌耐药性分析结果显示，全球范围内猪链球菌对四环素类抗生素的耐药率达90%以上，对大环内酯类抗生素耐药率达70%以上[12]，提示耐药性显著提升。但大多数临床猪链球菌仍然对β-内酰胺类抗生素，如青霉素等敏感。氟喹诺酮类，如恩诺沙星等也对猪链球菌的有较好的敏感性[13]。对于已经确诊猪链球菌感染的动物，针对不同情况需要选择合适的抗生素进行群体给药，或针对治疗价值较大的动物，比如具有怀孕母猪、种猪等进行个体给药。对于败血症型猪链球菌病，可以采用阿莫西林或青霉素等药物进行治疗；脑膜炎型可以采用可以穿透血脑屏障的抗生素，如磺胺类药物等进行治疗；关节炎型可以采用青霉素及阿莫西林进行治疗；淋巴结炎型可以采用青霉素进行治疗，在疾病晚期可以采取将脓肿切开并排出脓液后进行药物治疗。当然，药物联合相较于药物单独使用可发挥更佳效果，如青霉素或阿莫西林可以与氨基糖苷类、林可酰胺类及氟喹诺酮类联合使用发挥协同作用[13]。5. 展望综上所述，猪链球菌具有血清型众多、变异快等特点，加之抗生素耐药性不断加剧，使得猪链球菌病的防治面临较大挑战。由于猪链球菌通常在猪群中呈携带状态，如果出现感染源就很将其难从猪群中完全清除。因此，采取严格的生物安全防护措施，选择合适的疫苗并进行科学免疫，以及针对发病群体及时并有针对性使用药物是猪链球菌病防控的关键。开发新型、高效的猪链球菌病疫苗至关重要。挖掘具有广谱保护效果的抗原，结合最新的纳米技术，提升疫苗的安全性和保护效果，将为猪链球菌病的预防提供重要支撑。参考文献1.Segura, M., et al., Update on Streptococcus suis research and prevention in the era of antimicrobial restriction: 4th international workshop on S. suis. Pathogens, 2020. 9(5): p. 374.2.Baig, A., et al., Whole genome investigation of a divergent clade of the pathogen Streptococcus suis. Front Microbiol, 2015. 6: p. 1191.3.Murray, G.G.R., et al., The emergence and diversification of a zoonotic pathogen from within the microbiota of intensively farmed pigs. Proc Natl Acad Sci U S A, 2023. 120(47): p. e2307773120.4.Estrada, A.A., et al., Serotype and genotype (multilocus sequence type) of Streptococcus suis isolates from the United States serve as predictors of pathotype. J Clin Microbiol, 2019. 57(9): p. e00377-19.5.Huong, V.T., et al., Epidemiology, clinical manifestations, and outcomes of Streptococcus suis infection in humans. Emerg Infect Dis, 2014. 20(7): p. 1105-14.6.Thu, I.S.L., et al., Direct detection of Streptococcus suis from cerebrospinal fluid, positive hemoculture, and simultaneous differentiation of serotypes 1, 1/2, 2, and 14 within single reaction. Pathogens, 2021. 10(8): p. 996.7.Wang, H., et al., Development and application of a dual LAMP-LFD assay for the simultaneous detection of Streptococcus suis and Glaesserella parasuis. Front Cell Infect Microbiol, 2025. 15: p. 1575365.8.Sun, J., et al., A CRISPR/Cas12a-based DNAzyme visualization platform for rapid discrimination of Streptococcus suis serotype 2 versus 1/2 and serotype 1 versus 14. Talanta, 2025. 294: p. 128241.9.Hatrongjit, R., et al., Genomic epidemiology in Streptococcus suis: moving beyond traditional typing techniques. Heliyon, 2024. 10(6): p. e27818.10.Wang, H., et al., Synthesis of multi-fullerenes encapsulated palladium nanocage, and its application in electrochemiluminescence immunosensors for the detection of Streptococcus suis serotype 2. Small, 2014. 10(9): p. 1857-65.11.Xia, X., et al., Methods for the detection and characterization of Streptococcus suis: from conventional bacterial culture methods to immunosensors. Antonie Van Leeuwenhoek, 2018. 111(12): p. 2233-2247.12.Dechêne-Tempier, M., et al., Update on the mechanisms of antibiotic resistance and the mobile resistome in the emerging zoonotic pathogen Streptococcus suis. Microorganisms, 2021. 9(8): p. 1765.13.Haenni, M., A. Lupo, and J.Y. Madec, Antimicrobial resistance in Streptococcus spp. Microbiol Spectr, 2018. 6(2): p. 10.[END]

对于猪场的蚊蝇，我从来都当它们是〞首敌〞。因其对猪的危害比寄生虫和老鼠的危害大的多，尤其是蚊子，据说能传播一百多种疾病，大家较熟悉的人之间传播的如登革热，疟疾，博卡病毒等。猪，牛等动物间通过其传播的也有很多种，故包括人类的科学家，有时对它传播的传染病也束手无策，大家对它的为害深恶痛绝又无可奈何。因为蚊蝇的繁殖实在太快，数量实在太多。要完全消灭看来不可能。俺这几年观察蚊蝇的季节繁殖时间，及其繁殖生存环境（猪场周边），发现了一套适合本场的很好的控制蚊蝇数量的办法。第一个〞法宝〞，在饲料中添加猪场通用药——环丙氨嗪。环丙氨嗪是已有20年历史，是国际上最通用猪场灭蝇药，具有安全度高，灭蝇彻底的优势，可基本消灭猪粪中的蝇蛆，从根源上消灭苍蝇。第二，用杀草剂草甘磷，清除猪栏周边杂草。“趋污”是苍蝇的本色，控制苍蝇的是消除孳生源。猪舍周边的积水、杂草都会必须清除干净，舍内勤刮粪，刮粪的干净度要比以前更加严格。第三，喂猪时可采用“少吃多餐”的方法。让猪把料槽舔食干净再加料。如此避免料槽饲料残留招苍蝇。将猪舍温度控制在猪的生理最适温度也能够减少苍蝇聚集。比如产房温度控制在18-22摄氏度时，苍蝇会感觉到“凉”，更乐意到舍外去。第四,消灭猪舍里剩余的苍蝇。对于猪舍里剩余的苍蝇，一般就需要直接使用灭蝇药去解决。第五，猪买猪用蚊香。如此下来，猪栏里不管白天黑夜，蚊蝇极少。俺进栏铲一铲猪粪，丢在栏边，一会观察。只见上面爬着几只金色苍蝇，只有一两只黑苍蝇，由此可见，数量的确不多。

非洲猪瘟（ASF）自传入我国以来，给养猪业带来了巨大的经济损失。许多猪场在生物安全方面投入了大量人力、物力，但依然难以完全避免疫情的发生。这让许多养殖户感到困惑：明明已经严格执行了生物安全措施，为什么还是防不住非洲猪瘟？　　一、生物安全执行不到位，存在漏洞　　许多猪场虽然制定了严格的生物安全制度，但在实际操作中可能存在执行不到位的情况，例如：　　1.人员管理不严　　员工或访客未严格执行隔离、洗澡、换衣、消毒流程，可能携带病毒进入生产区。　　员工在猪场外接触过猪肉制品（如市场、餐馆），未充分消毒就进入猪场。　　2.车辆消毒不彻底　　饲料车、运猪车、粪污车等未经过彻底消毒，或消毒时间不足（ASFV对普通消毒剂抵抗力强，需要足够的作用时间）。　　车辆行驶路线交叉污染，如运猪车与饲料车共用同一通道。　　3.物资消毒存在盲区　　饲料包装、兽药、工具等未经过有效消毒（ASFV可在某些材料上存活数天至数月）。　　快递、外卖等外部物品未经处理直接进入猪场。　　4.环境消毒不彻底　　消毒剂选择不当（如未使用对ASFV有效的戊二醛、过硫酸氢钾等）。　　消毒频次不足，尤其在雨季或高温季节，病毒更易存活和传播。　　二、病毒传播途径多样，防不胜防　　非洲猪瘟的传播途径复杂，除了直接接触病猪外，还有许多间接传播方式容易被忽视：　　1.软蜱等媒介生物　　非洲猪瘟病毒可通过软蜱（一种寄生虫）传播，而猪场若未做好灭虫工作，可能成为病毒长期存在的隐患。　　2.野生动物（如野猪、老鼠、鸟类）　　野猪携带病毒后，可能通过水源、饲料污染传播至家猪。　　老鼠、鸟类可能机械性携带病毒进入猪场。　　3.水源污染如果猪场使用地表水（如河水、池塘水），而周边有疫情发生，病毒可能通过水源传播。　　4.空气传播（短距离）　　虽然ASFV主要通过接触传播，但在密集养殖环境下，气溶胶可能在一定范围内造成传播。　　三、猪群健康度不足，抵抗力差　　即使生物安全做得再好，如果猪群本身健康状况不佳，感染风险仍会大幅增加：　　1.猪群存在免疫抑制性疾病（如蓝耳病、圆环病毒病），导致抵抗力下降。　　2.饲料霉变（如黄曲霉毒素）影响猪的免疫功能。　　3.饲养密度过高，导致应激增加，易感程度上升。　　四、如何真正有效防控非洲猪瘟？　　1.严格执行生物安全，不留死角　　所有人员、车辆、物资必须经过规范消毒。　　设立多级缓冲区，避免交叉污染。　　2.加强媒介生物控制　　定期灭鼠、杀虫（尤其是软蜱）。　　防止鸟类、野生动物进入猪场。　　3.优化猪群健康管理　　做好基础疫苗免疫（如猪瘟、伪狂犬、口蹄疫等）。　　提高饲料质量，避免霉变。　　4.建立早期预警机制　　定期监测ASFV（如PCR检测），发现异常立即处置。　　实行“全进全出”管理，减少交叉感染风险。　　五、总结　　非洲猪瘟的防控是一项系统工程，仅靠单一措施难以完全阻断病毒。猪场在做好生物安全的同时，还需关注环境管理、媒介控制、猪群健康等多方面因素。只有采取综合防控策略，才能真正降低ASF的感染风险，保障猪场的安全生产。

1、兽用泰乐菌素：①属最初一代大环内酯类抗生素；②抗菌谱：大部分G+性菌（猪链球菌、葡萄球菌等）、小部分G-性菌、支原体（最敏感药物之一）、猪密螺旋体猪痢疾，对蓝耳没有作用，对增生性回肠炎效果弱于后两者； ③配伍技巧：与同类兽药、林可霉素、氟苯尼考、泰妙菌素、青霉素类配伍，药效下降；与多西环素、磺胺间甲氧嘧啶预混剂、硫酸粘菌素、大观霉素合用，药效增强或抗菌谱增大； 2、兽用泰万菌素：①属第3代大环内酯类抗生素，其合成方式是将泰乐菌素通过乙酰化等化学反应而合成，所以又称为“超级泰乐菌素”； ②抗菌谱：与同类药物泰乐菌素类似，此外对蓝耳病毒具有抑制效果，降低蓝耳病毒在猪只肺泡巨噬细胞中的繁殖力，但给药疗程需要持续7-15天方可见效，更适合母猪阶段的蓝耳控制，降低母猪流产率与产死胎弱仔率；泰万菌素对猪增生性回肠炎的治疗效果也优于泰乐菌素；③泰万菌素配伍技巧：配伍禁忌与泰乐菌素一致，在用于控制猪蓝耳病毒时，建议配合使用板清颗粒或黄芪多糖中药，以提高猪只免疫力；泰万菌素经典搭配泰万菌素的经典搭配方案需根据具体应用场景和病原体类型选择，以下是一些常见的合理配伍：呼吸道感染（猪、禽）泰万菌素 + 氟苯尼考：针对支原体与革兰氏阴性菌混合感染，如猪传染性胸膜肺炎、禽慢性呼吸道病。泰万菌素 + 多西环素（强力霉素）：扩大抗菌谱，增强对支原体、巴氏杆菌等的协同作用，适用于呼吸道综合征。肠道感染（猪）泰万菌素 + 硫酸粘菌素：用于猪增生性回肠炎、大肠杆菌腹泻，保护肠道健康。泰万菌素 + 新霉素：针对肠道革兰氏阴性菌感染，如猪痢疾、沙门氏菌病。蓝耳病继发感染（猪）泰万菌素 + 多西环素 + 磺胺类：辅助控制蓝耳病继发的细菌感染，稳定生产性能。母猪保健泰万菌素 + 林可霉素 + 大观霉素：用于母猪产前产后保健，预防生殖道感染和厌氧菌感染。注意事项：避免与青霉素类、林可霉素类、氟苯尼考等作用靶点相同的药物联用，以免拮抗。磺胺类药物与泰万菌素联用时，需分开溶解，防止沉淀。使用前建议进行药敏试验，根据病原体类型调整配伍方案。以上方案仅供参考，实际应用中需结合兽医指导和养殖场具体情况调整。3、兽用泰妙菌素：①与泰万菌素、泰乐菌素完全不同，泰妙菌素属截短侧耳类抗生素，与沃尼妙林属同一类药物； ②抗菌谱：抗菌谱与泰乐菌素也类似，主要为G+性菌（如猪链球菌、葡萄球菌、传胸）、支原体、密螺旋体猪痢疾、增生性回肠炎；对G-性菌和肠道感染不敏感，对蓝耳无效；对猪支原体、猪增生性回肠炎的效果强于大环内酯类抗生素，且耐药率很低；③配伍技巧：与聚醚类（莫能菌素、盐霉素等）合用毒性增加，禁止配伍；与大环内酯类、林可霉素合用，抗菌靶点一致，配伍拮抗，药效下降；与多西环素、金霉素、硫酸粘菌素、阿莫西林配伍协同增效；与金霉素依照1：3的配比使用，提高抗菌强度5倍左右；其次也可与氨基糖苷类、磺胺类兽药合用，不影响抗菌效果；

　猪副嗜血杆菌病又称多发性纤维素性浆膜炎和关节炎，也称格拉泽氏病。这种细菌在环境中普遍存在，世界各地都有，甚至是健康的猪群当中也能发现。近年来，传染性副猪嗜血杆菌病的报道很多，但对此病留下的后遗症报道很少。笔者在畜牧兽医技术推广服务过程中，发现副猪嗜血杆菌病留下的后遗症，因其治疗难度大、持续时间长和高死淘率令基层兽医及养猪业主望病兴叹，给养猪业造成了严重的经济损失。　　一、副猪嗜血杆菌病的流行特征　　1．1病原　　副猪嗜血杆菌病的病原为嗜血杆菌属的副猪嗜血杆菌，革兰氏阴性菌（G－），通常有荚膜。　　目前知有15个血清型，其中1、5、10、12、13、14型毒力最强，感染后，患猪多死亡；2、4、8、15型为中等毒力，死亡率低，但可以出现败血症，致生长停滞；血清3、6、7、9、11型，猪感染后无明临床症状。HP·S具有明显的地方特性。　　1．2流行特点　　该病只感染猪。主要传染源为病猪、康复猪和隐性感染猪，主要经呼吸道和消化道传播，病菌通过飞沫随呼吸或污染的饲料和饮水侵入体内，在机体抗病力降低的情况下，繁殖、产毒和致病。　　本病是一种严格的条件性致病菌，多种应激（运输、天气骤变、更换饲料、创伤等）是发病诱因；一年四季均可发生，但以天气变化较大的早春和深秋发生较多；本病与流感、猪瘟、蓝耳病、链球菌病等许多疾病共同发病；不同品种、不同年龄的猪均可发病，但以2～17周龄猪最易感，其中以5～10周龄最多见。发病率一般为40％～50％，病死率可达50％以上。　　1．3临床症状及后遗症　　1．3．1临床症状　　20～60 kg体重的猪发病最多。初次发病的猪场，接触病原后几天内就发病，出现体温高（患病猪的体温与原发病关系密切，有的高达41～42℃），有些猪由于发生脑膜炎而表现肌肉震颤、麻痹、惊厥。食欲减退直至废绝，呼吸困难，有的病猪表现出声低而沉的咳嗽、四肢关节及关节囊下沿肿大、跛行和行走不协调、弓背，皮肤和可视黏膜发绀，颤抖、共济失调，常于发病后2～3 d死亡。　　该病与传染性胸膜肺炎或急性败血型链球菌病同时发病，病程多在6～10 h呈急性死亡；多数病猪呈亚急性或慢性经过。病猪精神沉郁、食欲不振、中度发热（39.6～40℃）、呼吸浅表，有的病猪可见咳嗽、喘息、四肢末端及耳尖蓝紫。部分病猪由于胸腔疼痛，伏卧时双前肢跪地，长时间难于睡下。当病菌经过皮肤的创伤侵入或随血液侵及皮肤时，引起局部的皮肤发炎或坏死，部分病猪皮肤出现划痕伤，耳壳坏死。　　60kg体重以上的病猪临床表现以跛行、关节囊下沿肿大、弓背和行走不协调、生长速度减慢为主要症状。　　1．3．2后遗症　　该病发生急性期未死亡或耐过的病猪呈现多种后遗症状。　　典型的症状是被毛粗乱、生长发育停滞，病程长达数月，病猪因死淘而告终。耐过本病的公猪呈现慢性跛行，妊娠母猪流产，哺乳母猪因跛行、疼痛导致母性行为丧失，部分母猪发生顽固性子宫内膜炎；生长肥育猪食欲时好时坏，渐进性减食，对喂料反应迟缓。有的病猪粪便干燥、有的腹泻、有的病猪胃肠道出血导致粪便中带血；部分病猪反应迟钝、共济失调。时而呆立一隅、时而双耳紧贴颈部、时而一耳朝前一耳朝后。有的病猪走路摇摆、步态不稳，容易被撞倒地；部分病猪咳嗽声音低而沉、有的病猪明显喘气，有的卧地可见明显的腹式呼吸。　　1．4病理变化　　病理变化因病情严重程度和病程而异。　　内脏器官的浆膜面发生纤维蛋白渗出是该病的特征性病变。病死猪体表常有大面积的淤血和淤斑，病情严重的四肢末端、耳朵和胸背发绀。　　急性死亡的病猪，仅见胸腔、腹腔浆膜相连部位可见“蜘蛛网”丝状的纤维素性渗出物，肺脏淤血、水肿。　　病程稍长的胸腔淡黄色或黄色积液，肺表面浆膜、心外膜形成一层灰白色的纤维素性蛋白绒毛，当病情缓解时可发生心包粘连、肺与胸膜腔粘连。随病程延长，胸腔积液逐渐变为黄褐色；心、肺、肝、脾、胰、肠系膜、腹膜等浆膜面白色的纤维蛋白绒毛形成一层纤维素性假膜。　　当病情恶化时，胸腔器官浆膜面上的纤维素性假膜被积液溶解，胸腔积液变为酱油色、混有类似“豆腐渣”样残渣，味恶臭；若继发化脓性细菌感染时可见心包膜、肺与胸膜粘连部位形成的脓球。腹腔器官之间发生粘连，浆膜面上黄色的纤维素性假膜变腐。关节周围组织（常在关节囊下部）发炎和水肿，关节囊肿大，关节液增多、浑浊，内含呈黄绿色的纤维素性化脓性渗出物。　　当病情好转时，关节囊下部肿大的部位被机化形成“肉瘤”。发生纤维素性化脓性脑膜炎时，见蛛网膜腔内积蓄有纤维素性化脓性渗出物而致脑髓液变为浑浊。脑软膜充血、淤血和轻度出血。其他眼观病变表现为肺、肝、脾、肾充血与局灶性出血和淋巴结肿胀等。　　剖检后遗症的病死猪可见机体消瘦。脑回扁平，脑膜与头骨的内膜以及脑实质之间粘连；内脏器官浆膜面与邻近的组织发生粘连；胃黏膜大面积溃疡、十二指肠和小肠充血并盛有带血或酱油色液体，盲肠、结肠和直肠表面充血消肿。　　二、形成后遗症的原因　　（1）临床症状多样化，给诊断和治疗增加了难度。　　副猪嗜血杆菌病的症状不明显，多数情况下以继发或并发病出现。容易与猪链球菌、慢性猪丹毒、猪支原体浆膜炎－关节炎混淆，导致养殖场业主和兽医误治在所难免；许多兽医只发现原发病，经药物治疗后原发病症状消失，病猪刚有食欲就停止了治疗，失去了最佳治疗时机，是引起该病后遗症的主要原因之一。　　（2）阉割伤口感染的误治。　　笔者发现，新购仔猪阉割后相继发病，约经7～10 d全群发病，许多猪场因误治导致的后遗症随处可见。剖检可见输卵管、创口周围组织被覆一层黄色的纤维素性渗出物并相邻组织粘连，依病程不同可见不同程度的病理变化。全群几乎以死亡告终，病程长达1～3月。　　（3）药物选择不当。　　盲目用药加剧病情恶化。大多数猪场在病情不清楚、未经过药敏试验的情况下，使用林可霉素或头孢类药物进行治疗，由于大剂量用药、不断更换药物，导致病猪肝肾功能损害。　　不同地域的菌株对药物的敏感程度不一致。仅笔者所在地区、甚至一个县市，其临床症状和病理变化一致的情况下，同一种药物在不同养殖场效果不一致，表明发病菌株和抗药程度不一致。　　三、防治对策　　（1）免疫接种是预防该病的最好方法。　　副猪嗜血杆菌具有血清型众多和地域性流行的特点，菌苗的选择应与当地流行的血清型相符。先给母猪接种，通过初乳可使4周龄以内的仔猪获得保护力，仔猪4周龄时，再接种一次，可获得较高的保护率。种猪每半年预防1次。　　（2）加强饲养管理，减少应激。　　保持清洁卫生，通风良好，防寒防暑，尽量减少其他呼吸道病原的入侵，杜绝不同生产期的猪混养于一栏，减少猪的流动和运输，提高猪的抗病力。　　（3）早期诊断，正确治疗。　　急性发病的猪场，不难根据临床症状作出诊断，合理的使用药物效果理想且不留后遗症。有报道称本病对磺胺类药物，阿莫西林、阿米卡星、卡那霉素等敏感，但敏感程度与发病的地域性和菌株的耐药性而不同。因此，当猪群发现疑似本病病猪，在做好药敏试验的基础上，正确选用药物治疗是至关重要的。

　　由于其发病广泛、经济损失巨大而倍受广大规模化猪场的重视。据笔者调查，几乎所有的大中型猪场都实施猪伪狂犬疫苗的免疫接种，这对于我国猪伪狂犬病有效的预防和控制起到了非常重要的作用。尽管如此，目前仍有相当多的猪场因为对猪伪狂犬病的免疫预防认识模糊或被误导而导致免疫程序不合理、免疫密度小（只免母猪、不免仔猪）、疫苗选择不当等多方面影响因素的存在。进而引起猪伪狂犬病野毒抗体的阳性率维持在高水平，并导致猪场的生产水平下降和猪群健康状况的恶化，最明显的表现是商品猪群的呼吸道综合症（PRDC）日趋严重和生长阻滞，并造成较大的经济损失。鉴于此，笔者从免疫学的角度出发来阐述猪伪狂犬病的预防和控制，以期猪场管理者重视。　　1、免疫程序不合理　　问题1：有的疫苗供应商和/或有关专家推荐母猪产前和配种前都必须免疫接种，这对后备母猪而言相对合理，对于经产母猪则极不科学、而且十分危险。大家推算一下，按照此程序母猪每胎免疫两次，每年需要4-5次，每次免疫间隔时间的长短差异较大。母猪产前（一个月）到下一胎配种前的时间约为45-50天，而配种前到产前的时间间隔约为90天，这就是说一头母猪一年之中隔50天免疫一次，再隔90天免疫一次，再隔50天，再隔90天免疫，直到年终。同一头猪同一种疫苗而免疫时间间隔如此之大，极易造成野毒入侵和野毒扩散，同时疫苗浪费。建议：种猪群每年三次（间隔4个月）或每胎产前4-6周免疫一次，但必须选用安全、有效和合法的gE基因缺失疫苗。　　问题2：只免母猪不免仔猪。众所周知，伪狂犬病病毒可感染不同年龄的猪群，能引发不同的病症的损失。许多猪场只重视种猪群的猪伪狂犬病的免疫和预防而忽视了仔猪的感染和传播，这与目前PRDC的流行广泛、病因复杂也密切相关，此外，几乎国内所有猪场母猪（种猪）、仔猪和肉猪同场饲养、养猪技术和管理水平参差不齐、人员流动性大，没有实施全进全出和多点式生产等，这都造成难以阻断猪场内和猪场间的病原循环与传播，因此更应实施全群免疫、提高整体保护。　　问题3：许多猪场未做免疫监测便实施全群统一接种，造成意外损失和潜在威胁。一般来说，疫苗是用于健康动物的免疫接种来预防发病，而实际生产中的猪群总会存在少数感染猪和亚健康状态的猪，若不加分析选择的实行全群免疫风险非常大，而且部分猪存在抗体干扰和免疫抑制，往往造成免疫失败。　　2、疫苗接种途径：猪与鸡在呼吸系统结构和生产方式方面存在巨大的差异，目前国内伪狂犬免疫一般采取滴鼻加肌注的方式，尤其对于伪狂疫情较为严重的地区推荐滴鼻加两次肌注来加强对伪狂的免疫。　　3、免疫剂量不足：疫苗的免疫原性和免疫剂量是成功免疫的基础。部分猪场由于对疫苗接种存在模糊认识，总以为猪越小免疫剂量越小一味减轻仔猪初次接种量。恰恰相反，仔猪年龄小、体重轻，免疫系统发育还不十分完善，又有母源抗体存在，若不给予足够剂量的疫苗抗原，难以激发有效地免疫反应和免疫保护，即造成基础免疫失败，早期感染发生，疫病控制困难。再者猪伪狂犬病疫苗生产门槛低、厂家多，质量控制和检验标准参差不齐，许多疫苗剂量不准，从而易于导致免疫效果不佳。　　4、疫苗种类太多，难以选择：目前，猪用疫苗供应市场比较混乱，品种繁杂，没有标准，难以选择。　　鉴于此，选择疫苗需要注意一下两个方面。　　1：对疫苗而言，并非抗原含量越高越好，若抗原量太高，即剂量过大易于引起免疫耐受而致免疫失败。安全、有效的疫苗的抗原量应处于某一范围内，并非愈高愈好。　　2：不同基因缺失的弱毒疫苗最好不要混用，尽管基因重组的几率非常小。混用易于导致鉴别诊断和检测等方面的困难。　　关于免疫监测；由于强毒灭活疫苗的广泛使用，给野毒的监测带来了相当大的障碍，再加上许多猪场母猪带野毒和潜伏感染的现象持续存在、仔猪免疫与否无法统一，这都不利于免疫检测的准确性。鉴于目前国内这种复杂情况，一般先用比较一致的基因缺失疫苗免疫猪群，坚持2-3年，逐步用基因缺失的疫苗毒株取代中清除野毒，此后再做监测和根除。有条件的地区或猪场可以尝试下面几种方法：　　（1）淘汰扩群；　　（2）后代隔离；　　（3）检测和淘汰；　　（4）管理与免疫　　选择何种方式根据以下因素进行判断：　　首先：该病流行程度；　　第二、是否有尽快要求消除该病的需要；　　第三、费用问题；　　第四、再次感染的可能性；其它，如猪群的疾病状况，遗传价值，经营者所承担的义务及管理能力等。

兽用阿莫西林属于速效杀菌型、以抗革兰氏阳性菌为主、β-内酰胺类唯一可口服、治疗效果确切、能够让养殖户完全信赖的兽药，而对于兽用阿莫西林在猪场的最佳应用场景和高效使用技术。1、兽用阿莫西林的药物特点：①抗菌谱广：猪链球菌、猪肺炎球菌、猪葡萄球菌、猪丹毒杆菌、猪副伤寒沙门氏菌、仔猪黄白痢大肠杆菌、痢疾杆菌、变形杆菌、放线菌、钩端螺旋体均敏感；②抗菌机制速效杀菌：猪只口服给药→水解产生肽键→与细菌转肽酶→抑制细胞壁的合成→细菌裂解失去活性，且抗拒强度高于同类药物氨苄西林钠2-3倍；③药物吸收率高：猪只口服吸收效率大于90%，1小时可达血药峰值，耐胃酸，药物口服给药稳定；药物在猪只体内各个脏器、肌肉组织和腹膜的血药浓度均较高；药物在猪只体内代谢以尿液形式排出为主（口服6小时代谢50%以上）；2、兽用阿莫西林的适应症：①母猪产后炎症、全身性感染、泌尿系统感染、畜禽输卵管炎症；②保育仔猪常见的链球菌关节炎、巴氏杆菌猪肺疫、副猪嗜血杆菌和软组织感染、猪葡萄球菌皮炎的初期感染；③育肥猪丹毒治疗方案的口服给药首选药物；④仔猪大肠杆菌感染所致的黄白痢，与硫酸粘菌素或硫酸新霉素配合治疗（疗程3天左右，避免肠道菌群失衡）；⑤猪只革兰氏阳性菌所致的下呼吸道感染肺炎；3、兽用阿莫西林的高效使用技术：①兽用阿莫西林+卡巴匹林钙（或丙磺舒）：延迟阿莫西林在猪只体内的代谢速度，提高抗菌时长；②兽用阿莫西林+克拉维酸：提高抗菌效果，提高对耐药菌群的抗菌强度，降低剂量，避免耐药；③兽用阿莫西林易溶于水，耐胃酸，但是需要现配现用（不超过3小时），避免药物分解；④兽用阿莫西林不宜与酸性药物混合使用（如柠檬酸），避免形成沉淀；⑤兽用阿莫西林+氨基糖苷类（如新霉素）或粘菌素：提高对链球菌、大肠杆菌等病原的抗菌强度；⑥避免与氟苯尼考、大环内酯类抗生素（如泰乐菌素、替米考星）、四环素类速效抑菌型抗生素合用，以免产生拮抗作用，干扰抗菌效果；4、兽用阿莫西林的使用剂量：按猪只体重计算：每公斤体重给药6mg药物，或（若为10%含量的阿莫西林，则药物添加量为1kg/吨饲料）；注：上述所指的为保健剂量，若按治疗剂量需要加倍使用；

●推进农机与农艺深度融合，打通农业机械“研—产—推—用”各环节堵点，减少投喂量精度误差、提高投料稳定性，实现节粮降耗●所有设备均由计算机全程控制，可实时采集数据、分析数据，实现精准营养和精准饲喂8月26日，随着800余头能繁黑母猪陆续进入圈舍，位于遂宁市船山区桂花镇响堂村的天穗立体猪场正式运行。这是四川省首家装备了全程末端智能精准液态饲喂系列设备的生猪养殖场。“依托全流程自动化的液态饲喂模式，可以提高饲料适口性、减少饲料浪费。”四川省畜牧科学研究院养猪科学研究所所长龚建军介绍。今年1月，四川启动了“生猪智能精准液态饲喂设备研发制造推广应用一体化项目”。作为项目组牵头专家，龚建军告诉记者，项目旨在推进农机与农艺深度融合，打通农业机械“研—产—推—用”各环节堵点，减少投喂量精度误差、提高投料稳定性，实现节粮降耗。天穗立体猪场，则是该项目的阶段性成果。在猪场封闭前夕，8月21日上午，记者跟随龚建军等进行了实地探访。进入生猪智能化养殖基地一楼，小群养智能液态料饲喂站、分娩母猪智能液态料饲喂机、保育猪智能液态料饲喂机、生长育肥猪智能液态料饲喂机等关键设备已安装调试完毕。记者在编号为“002”的小群养智能液态料饲喂站显示屏看见，上面标注了母猪数量、新进母猪、采食不足、水压异常等信息。按照液态料饲喂标准，该设备特地设计安装了控制器、饲料下料仓、独立栏位、闭门器等重要部件。生猪液态饲喂，离不开精准二字。传统固体饲料喂养模式，很难精准掌握饲喂的量、时间等讯息，料槽等也很难及时清洗、容易引发疾病。龚建军介绍，天穗立体猪场的所有设备，均由计算机全程控制，可实时采集数据、分析数据，实现精准营养和精准饲喂。该猪场的建成投用，也引发了地方政府、企业的高度关注。遂宁市船山区农业农村局局长张贤告诉记者，该养殖场是践行资源集约化、环境生态化、饲养自动化、管理智能化养殖理念具体举措，有利于全区生猪规模化养殖率保持在85%以上。今年，成都一口吖吖农业有限公司负责人李建波计划新建一个存栏2400头能繁母猪的养殖场。采访当天，他专程从简阳市赶来参观学习。“智能精准液态饲喂技术，提高了饲料利用率，提高了饲料的消化吸收率，还降低了饲料灰尘对生猪健康的影响，有利于企业降本增效。”他分享考察心得说。据了解，3年内类似的智能精准液态饲喂设备，还将在成都市、绵阳市、宜宾市等地示范推广，助力四川打造万亿畜牧产业集群。（四川农村日报全媒体记者 裴玉松）

　在以前的文章中我们谈到过非传染性疾病急性死亡的原因分析及控制措施，非传染性疾病相对来说，具有一定的隐蔽性，散发、少量病例，造成的损失也是可控的。　　在笔者服务工作的过程中，更多是看到传染性疾病造成的问题，但是急性死亡的疾病是有些难以判断的。　　有的有明显的临床症状表现，比较好诊断；有的没有明显的症状，需要我们兽医更加的细心，及时做出正确诊断，采取措施，快速控制，减少损失。　　在临床上见到过的急性死亡的传染性疾病有：　　在仔猪常见的有急性黄痢、红痢、水肿病、哺乳仔猪口蹄疫等；　　在中大猪常见的有猪肺疫、传染性胸膜肺炎、急性败血性链球菌、产气荚膜梭菌造成的胀气死亡等。　　今天主要讲解导致仔猪急性死亡的传染性疾病。　　01、急性仔猪红痢　　仔猪红痢是由C型产气荚膜梭菌引起的1周龄内仔猪高度致死性的坏死性肠炎。　　本病主要侵害1~3日龄初生仔猪。　　最急性型在仔猪出生后，一天内就发病，临床见初生仔猪突然下血痢，后躯沾满血样稀粪，病猪虚弱，不愿走动，很快变为濒死状态。　　少数病猪没有下血痢便昏倒和死亡。此病往往出生后当天或次日死亡。　　剖检病理变化主要在空肠，有的扩展到整个回肠，空肠呈暗红色，肠腔充满含血的液体。肠系膜淋巴结鲜红色。整个病变肠段粘膜层和粘膜下层弥漫性出血。　　预防急性仔猪红痢一是通过加强消毒，尤其是临产母猪的乳头要进行清洗和消毒；　　二是母猪产前7天使用均消安（地美硝唑预混剂）口服进行预防。　　治疗可用均消安，仔猪刚出生就口服，有一定的效果。　　02、急性仔猪黄痢　　本病以1~3日龄仔猪最为多见，最急性的仔猪于生后数小时看不到症状突然死亡。　　同窝发病仔猪排黄色稀粪,，内含凝乳小片，这种现象尤以捕捉仔猪时更为明显。　　腹泻重时，小母猪阴户尖端和后肢被粪液沾污，病猪减吃或不吃奶，精神差，肛门松弛，排粪失禁，脱水消瘦，最后倒地昏迷死亡。　　控制黄痢首先需要对母猪的肠道菌群进行调整，抑制大肠杆菌的繁殖，减少仔猪接触到大肠杆菌的机会。　　可以在母猪产前7天添加20%治嗽静6g+卫免3g+绿益态6g/头/天。　　产后7天添加20%治嗽静6g+卫免3g+复方阿莫西林粉9g/头/天。　　03、哺乳仔猪口蹄疫　　哺乳仔猪的口蹄疫通常呈急性胃肠炎和心肌炎而突然死亡。　　此病属国家一类动物疫病，并且为人畜共患传染病，只能采取免疫措施进行预防，发病后要按疫情处理。　　04、仔猪水肿病　　该病多发于断奶前后，一年四季均可发生，多见于营养好和体壮的仔猪，突然发病死亡。　　有些先轻度腹泻后便秘，有些眼睑等水肿，或作共济失调等神经症状。　　病理变化主要是水肿，胃大弯、贲门部胃粘膜与肌层胶冻样水肿，肠系膜、皮下等也出现水肿。　　发病主要是因天气变化、断奶、去势、免疫接种、突然换料等应激因素的刺激和饲料品质不良的原因引起的。　　我们采取科学补饲、科学断奶、少饲多餐、防止突然更换饲料、饲喂质量好的日粮以及及时免疫接种等措施可以预防本病的发生，也可在饲料中添加亚硒酸钠VE预混剂进行预防。

技术领域：兽医治疗应用领域：动物疫病治疗知识产权类别（专利/标准物质 新兽药）：专利申请号：ZL 2024 102711443.8联系人：尼博项目简介：A型塞内卡病毒引起猪水泡样病变，病猪口鼻、吻突及蹄冠等部位的皮肤或黏膜处出现水泡、溃烂，临床上该病与猪口蹄疫、水泡性口炎、猪传染性水疱病等难以区分，给我国养猪业造成了严重的经济损失，目前尚没有针对该病毒的治疗药物。本发明在于提供木犀草素四甲醚在制备抗SVA的制剂中的应用，从而能够有效的预防、治疗塞内卡病毒病。

当前，我国口蹄疫疫情形势总体平稳，但国家口蹄疫参考实验室发现部分猪群中口蹄疫流行毒株发生变异，同时中东地区近年来流行的南非2型（SAT 2型）口蹄疫病毒传入我国风险较高，防控工作面临新挑战。为进一步指导做好口蹄疫防控工作，特制定本技术指南。一、确保疫苗免疫到位（一）科学选择疫苗。疫苗免疫是口蹄疫防控的有效手段。口蹄疫有7个血清型，不同血清型之间无交叉免疫保护性，同一血清型不同毒株的抗原性也存在差异，需选择疫苗毒株与优势流行毒株匹配性好的疫苗。从监测数据看，目前我国猪群中主要流行O型CATHAY拓扑型毒株和O型Mya-98毒株，牛羊群中主要流行O型Ind-2001e毒株。从国家口蹄疫参考实验室对流行毒株和疫苗株抗原匹配性分析看，当前部分疫苗毒株与猪CATHAY流行毒株匹配性下降。为确保防控效果，选择使用抗原谱广、纯度高的疫苗，并实施加强免疫，提高保护效果。各地在监测工作中，重点关注口蹄疫免疫群体中的发病畜，及时将阳性样品送国家口蹄疫参考实验室进行病原分析。密切跟踪流行毒株变异情况，评价疫苗免疫的有效性。（二）规范实施免疫。鼓励有条件的养殖场监测幼畜母源抗体水平，通常畜群母源抗体合格率在50%左右时，进行首次免疫。仔猪可选择在28～60日龄时进行初免，羔羊可在28～35日龄时进行初免，犊牛可在90日龄左右进行初免。首次免疫后，间隔1个月进行一次加强免疫，以后每间隔4～6个月再次进行加强免疫。家畜在调运前21～28天可进行一次强化免疫。免疫前应认真阅读疫苗使用说明书，检查家畜健康状况和疫苗性状，遵守疫苗注射操作规程，严格消毒注射器械和部位，注射深度应适中，注射后观察不良反应。（三）评估免疫效果。免疫后需定期监测抗体水平，评估免疫效果。使用灭活疫苗免疫的，按GB/T 18935-2018《口蹄疫诊断技术》推荐的ELISA方法检测抗体；使用合成肽疫苗免疫的，采用VP1结构蛋白抗体ELISA方法检测抗体。猪免疫28天后，牛羊等免疫21天后，抗体检测结果合格，判定为个体免疫合格。免疫合格个体数量占免疫群体总数不低于70%的，判定为群体免疫合格。根据监测结果，及时调整免疫程序或实施补免。二、加强疫病风险监测（一）强化边境地区监测。中东地区持续流行的SAT 2型口蹄疫病毒，可能通过动物或动物产品贸易、野生动物跨境活动及走私等途径传入我国。边境地区要加大排查力度，科学布局监测场点，针对接壤地区、动物或动物产品集散地等重点区域和场所，强化病原学监测，检出阳性的，及时报送监测信息，并及时将阳性样品送国家口蹄疫参考实验室作进一步分析。（二）强化重点环节监测。要强化调运、屠宰环节和散养场户等免疫薄弱环节的监测，加大抽样检测比例和频次，及时组织补免，筑牢防疫屏障。密切关注不同口蹄疫病毒株在畜群中的感染和流行状况，及时发现变异毒株。（三）科学选择检测试剂。目前市售检测试剂的敏感性和特异性存在差异，部分抗体检测试剂存在血清型交叉检出情况。要使用口蹄疫样品盘筛选检测试剂，根据检测目的选择相应试剂，免疫效果评估应选择能反映免疫保护水平、且特异性好的检测试剂，并通过标准样品等质控品跟踪评价所用试剂的稳定性。三、强化家畜及其产品的检疫（一）严格产地检疫。家畜离开饲养地之前，养殖场（户）应当向所在地动物卫生监督机构申报检疫。已经取得产地检疫证明的，从交易市场继续出售或运输的，货主应当向所在地动物卫生监督机构申报检疫。动物卫生监督机构受理检疫申报时，应当结合当地口蹄疫疫情状况，并根据动物检疫管理办法和检疫规程规定作出是否受理决定。实施检疫时，官方兽医或协检人员应当了解养殖场（户）是否按规定进行了口蹄疫免疫，且在免疫保护期内。检疫合格的，出具检疫证明；检疫不合格的，按照国家有关规定处理。（二）强化屠宰检疫。屠宰加工场所要严格执行家畜入场查验登记、待宰巡查等制度，查验进场待宰家畜的产地检疫证明和畜禽标识，发现家畜出现疑似口蹄疫症状的，应当立即向农业农村主管部门或者动物疫病预防控制机构报告。四、强化生物安全管理指导养殖场户根据本场实际建立人员、车辆、畜群、物资等管理制度，严格落实生物安全措施。限制无关人员进出养殖场，严格执行进出人员更衣换鞋、手部消毒等卫生制度，有条件的养殖场，可在入口处设立淋浴间。禁止外来车辆随意进入养殖场，确需进入的，应彻底清洗消毒。场内严格实施净区和污区管理，人员、物资、车辆、家畜等应遵循从低风险区向高风险区移动的原则。落实引种隔离观察制度，确认畜群健康后方可混群饲养。五、严格疫情报告处置一旦发现病畜出现体温升高，唇部、舌面、齿龈、鼻镜、蹄踵、蹄叉、乳房等部位有水疱等症状，要立即向所在地农业农村主管部门或者动物疫病预防控制机构报告，限制家畜及其产品、饲料及垫料、废弃物、运载工具、有关设施设备等移动。对所有病死畜、被扑杀畜及其产品、排泄物，以及被污染或可能被污染的饲料、垫料及污水等，进行无害化处理。对被污染或可能被污染的物品、用具、交通工具、圈舍环境等进行彻底清洗消毒。                                                                                                                                                                         中国动物疫病预防控制中心                                                                                      （农业农村部屠宰技术中心）

近期，有养猪散户反映再度遭遇非瘟侵袭，不得不清场止损，就连大型猪企也未能幸免。受此影响，部分地区生猪出栏节奏加快，猪价持续低迷，许多养殖户深陷经营困境。尽管非瘟至今尚无有效疫苗和治疗药物，但掌握其症状表现、季节特性及传播规律，仍是防控关键。此前已总结过非瘟的症状与基础预防措施，本文将进一步解析其传播特点与发病规律，为养猪户提供参考。一、夏季非洲猪瘟的传播特点1、夏季由于各类蚊虫、各种苍蝇、蜱虫、老鼠、蛇等繁衍迅速，有利非瘟传播。本来就是各种疾病传播的最佳季节，非瘟病毒也不例外，通过苍蝇，蚊虫、老鼠等进行传播，蚊蝇通过沾染有含病毒的粪便、死猪、猪肉之后感染到猪场，不仅仅是通过感染非瘟的猪进行传播，还有通过人们购买到非瘟病毒猪肉，也可以传播，也是为什么猪场要远离人群居住地，一方面减少气味污染，一方面减少疾病传染。2、夏季人员活动频繁，人们接触人广。比如饲料配送人员，生猪收购人员，猪肉贩子，猪肉摊贩、以及餐馆厨师、配菜切菜工等等，都有可能接触到有非瘟病毒的猪和猪肉，间接携带非瘟病毒，所以养猪场，严格无关人员进出猪场，要有严格的消杀措施，自己控制不随便购买市场猪肉，接触高危人员，及时消毒，猪场应该有专门的工作服，尽可能切断人为因素带来的非瘟病毒。二、夏季非瘟发病规律有哪些？1、猪群不同，发病不同。首先是年龄大的猪先发病，母猪会先期发病，其次就是保育猪、仔猪、中猪后发病，而未断奶乳猪少发病，或者最后发病。母猪发病体现在产后母猪、空怀母猪为最易发病，其次是妊娠期母猪后发病，根据发病症状和猪群发病规律来判断是否发生非瘟。2、非瘟发病后，持续高烧难退，缓慢扩散的规律。当附近有非瘟病例后，应该及时谨慎观察猪场猪的变化，对发病猪仔细观察，因为高烧不退症状容易和猪场基础疾病的混合感染相似，比如蓝耳混感、呼吸道混感，症状极为相似，这里有点区别就是，基础病混合感染，是先有前期基础疾病症状，在没有采取措施后会大面积快速爆发。而非瘟不是，非瘟是逐渐爆发，且无基础疾病症状，如咳嗽，蓝耳犯红现象等。3、根据发现猪生病后，一般都会打针，出现异常判断非瘟。比如会打针退烧、消炎止咳方面的药物。非瘟病毒会引起败血病，导致打针后，血流不止，或者难以止血，这是因为败血病容易造成血液成分不足，血小板减少，凝血功能差，感染非瘟后，血液发生变化，血液颜色深暗，就要注意是否感染非瘟了。4、母猪的异常死亡，无常见疾病特征出现急性死亡。这种情况若发生在母猪分娩前后、分娩后、或者在分娩中出现急性死亡，因为此阶段母猪抵抗力下降，身体虚弱，病毒容易趁虚攻击母猪免疫系统，而非此阶段母猪表现正常，无疾病征兆，就要自查、死亡母猪是否感染非瘟。5、猪场育肥猪中肥猪，更易发病、早发病、出现急性死亡。因为目前圈舍养猪，饲料能量高、大肥猪活动少，本身剧烈运动都容易造成应激反应感染非瘟病毒后，身体机能差，前期症状不明显，发病中后期病情快速加重，出现莫名急性死亡，也要注意是否感染非瘟病毒。以上5点常见非瘟感染后发病规律，朋友们可以收藏，帮助自己分析和辨别非瘟是否感染，了解规律及时把发病猪做好隔离，和死亡猪进行检测，以此来确定猪场是否感染非瘟。非瘟对于养猪业是致命的，所以养猪朋友，当摆在养猪过程中疾病防控第一位，生物安全不松懈，也有利于其它疾病的预防。

　猪圆环病毒病是一种由圆环病毒引发的传染病。此病对猪的感染率颇高，主要侵袭哺乳仔猪与育肥猪。在江西丰城市某养猪场，8月份时100头育肥猪中有2头猪突然发病，历经半个月，累计有30头猪被感染，感染率高达30%，且死亡率近乎100%。该病以体温升高、便秘或下痢、咳嗽、呼吸困难、皮肤苍白、进行性消瘦直至死亡等为主要症状表现；病理变化主要表现为全身组织器官出现炎症。依据流行特点、临床检查、剖检变化以及实验室检查结果，最终确诊为猪圆环病毒病。经采用抗生素、抗菌素治疗均无效，而使用患猪圆环病毒感染的组织灭活苗进行紧急接种后，疾病得到有效控制。现将具体情况报告如下：　　一、流行特点　　该养猪场仅50千克以下的育肥猪感染猪圆环病毒（PCV）后发病，50千克以上的育肥猪、母猪等虽会被感染但并不发病。而且发病进程较为缓慢，发病猪中大约半数会在2-8天内死亡，其余半数猪则在衰弱状态下残存数周，几乎无康复的猪，致死率达80%-100%。猪对PCV具有较强的易感性，主要通过口腔、呼吸道途径感染。　　二、临床症状　　患病猪体温升高，通常在40.5-41.5℃，精神萎靡不振，进食量减少或绝食，皮肤苍白，呈进行性消瘦状态，同时伴有咳嗽、呼吸频率加快以及呼吸困难等症状。体表淋巴结，尤其是腹股沟淋巴结显著肿大。患病猪有的在一开始就出现下痢症状，有的则在发病后期才出现，一旦出现下痢，病猪会在1-2天内死亡。部分患病猪还可见皮肤、可视黏膜出现黄疸。　　三、剖检变化　　患病猪全身淋巴结，特别是腹股沟淋巴结、肠系膜淋巴结、气管支气管淋巴结及下颌淋巴结均肿大2-5倍，切面硬度增加，呈现均匀的白色。肾脏出现水肿、苍白现象，被膜下有白色坏死灶。肺脏肿胀，尖叶和心叶萎缩或呈肉样改变。肝脏颜色发暗、萎缩，肝小叶间结缔组织增生。脾脏肿大，呈肉样变化，切面无充血表现。盲肠和结肠黏膜充血或瘀血。　　四、防治及对策　　该养猪场确诊感染PCV后，立即采取积极的防治措施，进行两次PCV组织灭活苗紧急接种，取得了良好效果，基本控制了疾病的蔓延，同时结合使用一些抗生素、抗菌药，有效预防了继发感染。　　据相关报道，目前尚无有效治疗和控制猪圆环病毒病的药物。建议受威胁地区可使用组织灭活苗进行预防。一般采取的对策包括：加强饲养管理，降低饲养密度，实行全进全出制度；改善卫生环境，注重日常的防暑防寒以及驱虫灭鼠工作；强化常规猪病的预防工作，尤其要重视繁殖障碍及呼吸道综合症的预防；严格控制来访车辆、货物进入猪场，避免从疫区引进猪；严格执行猪场的消毒制度。

最近后台有养殖户咨询：猪群突然发烧、皮肤发红，有的还贫血消瘦，这到底是什么病？排查后发现，不少是猪附红细胞体病在“捣乱”。这种由血液寄生虫引起的疾病，看似不显眼，却能悄悄拖垮猪群长势，甚至造成批量死亡，今天就带大家一文读懂它！　　什么是猪附红细胞体病？　　猪附红细胞体病，简单说就是附红细胞体（一种寄生在红细胞表面的微生物）“盯上”了猪的血液。它们会破坏红细胞，导致猪贫血、缺氧，还会降低免疫力，让猪更容易感染其他疾病，堪称猪场的“吸血小偷”。　　更麻烦的是，它一年四季都可能发生，尤其是夏秋季蚊虫多的时候，发病率会明显升高，而且不同年龄的猪都可能中招。　　猪感染后，有哪些典型症状？　　附红细胞体病的症状很有特点，养猪人可以重点观察这几点：　　-高烧不退：体温突然升到40~42℃，持续发热，用普通退烧药效果差；　　-皮肤“变色”：耳尖、鼻镜、腹部、四肢内侧发红，严重时变成紫红色，有的猪皮肤还会出现出血点；　　-贫血消瘦：病猪精神差、不爱吃料，慢慢变得消瘦，眼结膜发白（贫血症状），尿液发黄甚至呈酱油色；　　-不同阶段表现不同：　　仔猪感染后可能拉黄色稀便，死亡率较高；　　母猪感染后可能流产、产弱仔，产后奶水不足；　　育肥猪则生长速度明显变慢，出栏时间推迟。　　如果猪群出现“高烧+皮肤发红+贫血”的组合，就要警惕附红细胞体病了！　　附红细胞体是怎么传播的？　　这种寄生虫的传播方式很“灵活”，主要有这几种途径：　　1.吸血昆虫是“主力”：蚊子、蜱虫、虱子等叮咬病猪后，再叮咬健康猪，就会传播病原体，这也是夏秋季高发的原因；　　2.器械交叉感染：打针、断脐、阉割时，器械没彻底消毒，接触病猪血液后再接触健康猪，可能造成传播；　　3.母猪传给仔猪：怀孕或哺乳期间，病原体可能通过胎盘或奶水传给小猪；　　4.接触病猪血液：清理病猪粪便、处理伤口时，接触到带菌血液也可能感染。　　关键！附红细胞体病该如何防控？　　对付这种病，要坚持“预防为主、早治早好”，具体可以这么做：　　1.灭虫防虫是重点　　夏秋季定期给猪舍喷洒杀虫剂，消灭蚊子、蜱虫、虱子；安装防蚊网，减少昆虫进入；猪群密度不要太高，避免打架受伤后被昆虫叮咬。　　2.严格消毒，避免交叉感染　　打针、阉割、断脐的器械，必须用沸水或酒精彻底消毒，最好一头猪一套；接产或处理伤口时，饲养员要戴手套，避免接触病猪血液。　　3.加强饲养管理，提高抵抗力　　保证饲料营养均衡，尤其是补充铁、维生素B12等，减少贫血风险；猪舍保持干净干燥，定期清理粪便，降低病原体滋生机会。　　4.早发现、早用药　　一旦发现疑似症状，及时隔离病猪并请兽医诊断。治疗附红细胞体病，常用药物有土霉素、多西环素、血虫净（贝尼尔）等，早期用药效果好，严重贫血的猪可以适当补铁。　　最后提醒　　猪附红细胞体病虽然不会直接让人感染，但它会悄悄影响猪群健康和养殖效益，千万别掉以轻心。尤其是夏秋季蚊虫活跃期，一定要做好防虫和消毒，发现异常及时处理！